實時熒光定量PCR檢測人IL9 mRNA方法的建立及應用
【摘要】 目的: 建立檢測人白介素9 (interleukin9,IL9) mRNA的SYBR GreenⅠ實時熒光定量PCR( realtime fluorescence quantitative PCR, qRTPCR)方法。方法: 分離人外周血單個核細胞(peripheral blood mononuclear cells, PBMC),經PMA和離子霉素刺激活化后提取總RNA并逆轉錄成cDNA。擴增產物與pMD18T載體連接構建質粒標準品。采用qRTPCR方法檢測IL9 mRNA的表達水平。評價該方法的線性及特異性,應用該方法檢測Graves病患者PBMC中IL9 mRNA 表達水平。結果: 建立了人IL9的SYBR GreenⅠ實時熒光定量PCR檢測方法。該法的標準曲線相關系數r2為0.995~0.998,熔解曲線分析產物為單峰。Graves病患者PBMC中IL9 mRNA的相對表達水平明顯高于健康對照組(P<0.01)。結論: 建立的檢測人IL9 mRNA的SYBR GreenⅠ實時熒光定量PCR方法靈敏、特異性好,為進一步臨床應用提供了實驗基礎。
【關鍵詞】 白細胞介素9; 實時熒光定量PCR; SYBR GreenⅠ
[Abstract] Objective: To establish a SYBR GreenⅠ based realtime fluorescence quantitative PCR (qRTPCR) method for detection human interleukin9 (IL9) mRNA expression. Method: The specific primers were designed according to the conserved sequence of human IL9 gene. Total RNAs were extracted from human peripheral blood mononuclear cells (PBMC) which were stimulated by PMA and ionomycin, then the RNAs were transcribed reversely into cDNAs. The plasmid standards were constructed. The sensitivity and specificity of the method were eva luated. The relative expression levels of human IL9 mRNA in PBMCs from patients with Graves′ disease (GD) and healthy controls were detected by this method. Results: The coefficient of correlation of the standard curve of this method was 0.995-0.998, melting curve analysis showed single peak. The relative expression levels of human IL9 mRNA in GD group were higher than that in healthy control group (P<0.01). Conclusion: The method to detect IL9 by SYBR GreenⅠbased qRTPCR was good in sensitivity, specificity and linear function. It can be used as a standard method of qRTPCR for detection of human IL9 expression.
[Key words] interleukin9; realtime fluorescence quantitative PCR; SYBR GreenⅠ
早先認為IL9是由Th2細胞分泌的一種細胞因子,在抗寄生蟲感染及過敏性哮喘中發揮重要作用。近期研究發現有一種新的CD4+T細胞亞群,主要分泌IL9及IL10,稱之為“Th9細胞”, 在炎癥反應及自身免疫性疾病中發揮重要的作用[1-3]。我們建立了一種檢測人IL9 表達的實時熒光定量PCR(realtime fluorescence quantitative PCR, qRTPCR)方法,并應用于Graves病患者外周血單個核細胞(peripheral blood mononuclear cell, PBMC)中人IL9 mRNA的檢測,為進一步研究IL9在臨床中的應用提供了實驗手段。歷史論文發表
1 材料和方法
1.1 材 料
1.1.1 研究對象 Graves病患者組22例(男5例,女17例),平均年齡(31.4±9.4)歲,均為經江蘇大學附屬人民醫院確診的初診患者。健康對照組20例(男5例,女15例),平均年齡(29.6±10.3)歲,無慢性疾病及自身免疫性疾病。
1.1.2 主要試劑和儀器 人淋巴細胞分離液(天津灝洋生物技術有限公司),RPMI1640培養基(Gibco公司),小牛血清(杭州四季青生物工程有限公司),乙酸肉豆蔻佛波醇(PMA)、離子霉素(Sigma公司),Trizol(Invitrogen公司),逆轉錄試劑盒FSK101(ToYoBo公司),rTaq酶、dNTPs、10×PCR 緩沖液、pMD18T載體、BamH Ⅰ 、Hind Ⅲ(TaKaRa公司),熒光定量PCR試劑盒Platinum SYBR Green qPCR SuperMixUDG with ROX(Invitrogen公司),Stratagene Mx3000P熒光定量PCR儀(Stratagen公司),pMD18Tβ肌動蛋白質粒由本實驗室構建并保存。
1.2 方 法
1.2.1 引物設計及合成 利用Oligo 6.0軟件根據基因庫中IL9(NM_000590)的序列設計PCR引物。IL9:上游引物5′CCAGCTTCCAAGTGCCACTGC3′; 下游引物5′TGCATGGTGGTATTGGTCATCTG3′;擴增片段125 bp。β肌動蛋白:上游引物5′CACGAAACTACCTTCAACTCC3′;下游引物5′CATACTCCTGCTTGCTGATC3′;擴增片段262 bp[4]。以上引物均由上海生工生物工程技術服務有限公司合成。
1.2.2 樣本處理 取5 ml肝素抗凝靜脈血,使用人淋巴細胞分離液分離PBMC, 用RPMI1640完全培養基調整細胞密度為1×106/ml,取1 ml放入24孔板,以50 ng/ml PMA和1 μg/ml離子霉素于5%CO2、37℃刺激培養5 h后收集細胞,加入1 ml Trizol試劑裂解細胞,提取總RNA。用逆轉錄試劑盒以Oligo(dT)20將總RNA逆轉成cDNA。反應條件:42℃,20 min;99℃,5 min;4℃,5 min。合成的cDNA存于-20oC冰箱備用。
1.2.3 pMD18TIL9重組質粒的構建 以上述制備的cDNA為模板,利用PCR擴增IL9片段。反應條件:94℃預變性5 min;94℃,30 s;58℃,30 s;72℃,30 s;35個循環;72℃,7 min。將PCR產物與pMD18T載體進行TA克隆,經BamH Ⅰ 酶切、BamH Ⅰ和Hind Ⅲ雙酶切及PCR鑒定,陽性克隆送上海英駿公司測序,證實與基因庫中IL9序列完全一致。陽性克隆菌株通過LB培養基擴增,抽提并純化質粒,將純化質粒稀釋成102~107/μl作為標準品,于-20℃冰箱保存備用。
1.2.4 標準曲線的制備 以稀釋的標準品作為模板在熒光定量PCR儀上進行擴增,制備標準曲線。根據試劑盒說明:50℃ 2 min;95℃ 預變性2 min;95℃ ,15 s; 58℃(IL9)/56℃ (β肌動蛋白),20 s;82℃(IL9)/86℃(β肌動蛋白)8 s;擴增40(IL9)/30(β肌動蛋白)個循環。為避免引物二聚體干擾,分別在82℃(IL9)/86℃(β肌動蛋白)收集熒光信號。擴增結束后由儀器軟件繪制標準曲線。
1.2.5 特異性的評價 標準品及臨床標本cDNA在熒光定量PCR儀上進行擴增后進行熔解曲線分析,檢測PCR產物是否為目的產物,分析該方法的特異性。
1.2.6 樣本IL9 mRNA相對表達量的檢測 將樣本cDNA、標準品、空白對照以上述反應體系及條件同時進行擴增,根據標準曲線分別檢測每個樣本的IL9和β肌動蛋白的拷貝數,并以β肌動蛋白為參照校準IL9的相對表達。
1.2.7 統計學分析 利用SPSS12.0軟件進行統計分析。數據以中位數及四分位數間距(interquartiles range, IQR)表示,組間比較采用MannWhitney檢驗。以P<0.05為差異有統計學意義。
2 結 果
2.1 人IL9 mRNA SYBR GreenⅠ實時熒光定量方法學的建立
2.1.1 pMD18TIL9重組質粒的鑒定 pMD18TIL9重組質粒經BamH Ⅰ 和Hind Ⅲ雙酶切,可見2560 bp的載體片段及164 bp小片段,同時經PCR擴增出125 bp的片段(圖1)。質粒測序結果顯示其序列與IL9基因序列完全一致,從而證實pMD18TIL9陽性質粒構建成功。
1:TaKaRa DL2000 DNA 標準參照物; 2:pMD18TIL9質粒PCR產物; 3:pMD18TIL9 BamHⅠ和Hind Ⅲ雙酶切; 4:pMD18TIL9質粒 BamH Ⅰ酶切; 5:TaKaRa 250 bp 標準參照物
圖1 pMD18TIL9重組質粒的鑒定結果
Fig 1 Identifying result of recombinant plasmid pMD18TIL9
2.1.2 IL9標準質粒的擴增曲線及標準曲線 將構建成功的pMD18TIL9質粒稀釋10倍為107~102 拷貝數/μl作為模板進行擴增,制備其標準曲線。其擴增曲線見圖2a,其標準曲線如圖2b所示。相關系數r2 為0.995~0.998;斜率M為-3.252。其擴增效率為103%。
2.1.3 qRTPCR檢測IL9 mRNA方法的特異性 為檢驗該方法的特異性,在每次擴增后均進行熔解曲線分析,由圖3可以看出質粒標準品和臨床標本cDNA的擴增產物為單一峰,表明只有IL9目的基因的擴增而無其他雜帶,特異性好。
2.2 Graves病患者PBMC中IL9 mRNA相對表達水平的檢測歷史論文發表
Graves病組和健康對照組的IL9 mRNA相對表達水平以IL9/β肌動蛋白比值表示。圖4顯示Graves病組和健康對照組的比值分別為0.0003(IQR 0.00004~0.001)和 0.0018(IQR 0.001~0.004),兩者比較,差異有統計學意義(P<0.01)。
3 討 論
機體內CD4+T細胞是包括許多亞群的異質性細胞,在體內微環境的作用下,能分化成不同類型具有不同免疫功能的亞群,如Th1、Th2、Treg及Th17等 [5]。Th1主要分泌IFNγ、IL2 、TNFβ ,主要介導細胞免疫; Th2主要分泌IL4和IL5,介導體液免疫和抗寄生蟲感染;Treg細胞在體內調節Th細胞和Tc細胞使之處于動態平衡從而維護機體的免疫自身穩定[6]; Th17主要分泌IL17、IL22 等因子,在自身免疫性疾病的發生及抗感染中發揮重要作用[7]。最近,又鑒定出“Th9”細胞,為已有的Th細胞亞群又增添了新成員。TGFβ1及IL4的聯合作用可使抗原刺激活化的初始型CD4+ T細胞分化為Th9細胞[1]。Th2細胞在TGFβ1的作用下也可轉分化為Th9細胞[2]。原認為是Th2類細胞因子的IL9,現認為是由Th9細胞分泌,因此檢測IL9的表達對研究Th9細胞分化及其在自身免疫性疾病、慢性炎癥、腫瘤等疾病中的作用有著重要的臨床和科研意義。
Graves病是一種器官特異性自身免疫性疾病,機體產生抗促甲狀腺激素受體及甲狀腺球蛋白等自身抗體[8],其具體的致病機制還未闡明,傳統上大多數學者認為Graves病是由體液免疫應答異常所引起的[9],但Th9細胞在Graves病中的作用未見報道。本研究中,我們發現Graves病患者外周血中IL9 mRNA的表達水平明顯高于健康對照組(P<0.01),這提示患者體內可能存在著Th9細胞的極化及IL9, IL10等細胞因子表達增強的現象,為探究Graves病的致病機制及治療手段提供了新的思路。
本研究建立了一種檢測人IL9 mRNA的 qRTPCR方法。在pMD18TIL9質粒標準品為102~107/μl范圍內,該方法標準曲線的相關系數為0.998,說明該方法的線性較好,靈敏度高;斜率為-3.252具有很好的擴增效率(103%)。同時,樣本cDNA擴增后的熔解曲線呈單個峰,只有目的基因而無引物二聚體等非特異性擴增產物,說明該方法的特異性較好。因此,本研究建立的檢測人IL9 mRNA的qRTPCR方法特異、靈敏,能夠準確檢測IL9 mRNA的含量,從而為進一步的臨床檢測提供了實驗基礎。
【參考文獻】
[1] Dardalhon V, Awasthi A, Kwon H, et al. IL4 inhibits TGFbetainduced Foxp3+ T cells and, together with TGFbeta, generates IL9+ IL10+ Foxp3(-) effector T cells[J]. Nat Immunol, 2008,9(12):1347-1355.
[2] Veldhoen M, Uyttenhove C, van Snick J, et al. Transforming growth factorbeta ‘reprograms’ the differentiation of T helper 2 cells and promotes an interleukin 9producing subset[J]. Nat Immunol, 2008,9(12):1341-1346.
[3] 田 潔,王勝軍,許化溪. Th9細胞:一種新型效應性CD4+T細胞亞群[J]. 細胞與分子免疫學雜志, 2009,25(9):853-855.
[4] 吳 蔚,王勝軍,李遇梅,等.皮肌炎患者外周血CD4+T細胞中TGFβ1mRNA表達及意義[J]. 江蘇大學學報:醫學版, 2008, 18(3): 255-257.
[5] Zhu J, Paul WE. CD4 T cells: fates, functions, and faults[J]. Blood,2008,112(5):1557-1569.
[6] Green EA, Gorelik L, McGregor CM, et al.CD4+CD25+ T regulatory cells control antiislet CD8+ T cells through TGFbetaTGFbeta receptor interactions in type 1 diabetes[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2003,100(19):10878-10883.
[7] Liang SC, Tan XY, Luxenberg DP, et al. Interleukin (IL)22 and IL17 are coexpressed by Th17 cells and cooperatively enhance expression of antimicrobial peptides[J]. J Exp Med, 2006,203(10):2271-2279.
[8] Weetman AP. Autoimmune thyroid disease: propagation and progression[J]. Eur J Endocrinol,2003,148(1):1-9.
[9] Chen B, Tsui S, Boeglin WE, et al. Interleukin4 induces 15lipoxygenase1 expression in human orbital fibroblasts from patients with Graves disease. Evidence for anatomic siteselective actions of Th2 cytokines[J].J Biol Chem, 2006,281(27):18296-18306.
本站論文資源均為來自網絡轉載,免費提供給廣大作者參考,不進行任何贏利,如有版權問題,請聯系管理員刪除! 快速論文發表網(www.6scc.cn)本中心和國內數百家期刊雜志社有良好的合作關系,可以幫客戶代發論文投稿.
投稿郵箱:ksfbw@126.com
客服Q Q:
82702382
聯系電話:15295038833
本站論文資源均為來自網絡轉載,免費提供給廣大作者參考,不進行任何贏利,如有版權問題,請聯系管理員刪除!